Template:KIT-Kyoto-Augsut28

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August 28

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Time

9:00~

Member

岩城,竹内,中村,臼井,革島
Iwaki,Takeuchi,Nakamura,Usui,Kawashima

Purpose

  1. Making of primer mix of AcrAB,dps,SodA and OxyR.[Takeuchi,Usui]
  2. PCR of AcrAB and OxyR.[Iwaki]
  3. PCR of dps and hemH.[Usui]
  4. Agarose gel electrophoresis of dps and hemH.[Iwaki]
  5. DNA miniprep of pSB1A2(E0420) and pSB1A2(I13522).[Nakamura]
  6. Agarose gel electrophoresis of pSB1A2(E0420) and pSB1A2(I13522).[Nakamura]
(1) AcrAB,dps,SodA,OxyRのプライマーミックス(PM)の作成 [竹内、臼井]
(2) AcrAB,oxyRのPCR [岩城]
(3) dps,hemHのPCR [臼井]
(4) dps,hemHの電気泳動 [岩城]
(5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ [中村]
(6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動 [中村]

Method

(1) Primer MIXの作成
 AcrAB,dps,SodA,OxyRのPrimerF,PrimerRそれぞれ10μLずつを80μLのH2Oに溶解し、
 全量100μL、10pmol/μLにした溶液(PrimerMIX)を作成した
(2) AcrAB,oxyRのPCR
<PCR試薬組成>
AcrABoxyR
PrimerF1.5μL1.5μL
dNTPs5μL5μL
KOD-Plus- Buffer5μL5μL
テンプレートDNA(DH5α)1μL1μL
MgSO44μL4μL
H2O33μL33μL
KOD-Plus-1μL1μL
total50μL50μL
<設定>
Pre Denature94℃2min
35Cycles↓
 Denature94℃15sec
 Annealing62.8℃30sec
 Extension68℃30sec
+Extension68℃2min
4℃


(3) dps,hemHのPCR
<PCR試薬組成>
dpshemH
PrimerF1.5μL1.5μL
dNTPs5μL5μL
KOD-Plus- Buffer5μL5μL
テンプレートDNA(DH5α)0.5μL0.5μL
MgSO44μL4μL
H2O33μL33μL
KOD-Plus-1μL1μL
total50μL50μL
<設定>
Pre Denature94℃2min
35Cycles↓
 Denature94.0℃15sec
 Annealing60.0℃30sec
 Extension68.0℃30sec
+Extension68.0℃2min
4℃


(4) dps,hemHの電気泳動 
 (3)のPCRの後、増幅を確認するために電気泳動にかけ、写真撮影を行った
 諸条件を以下に示す
<条件>
 DNA量  5μL
 電気泳動 100V 30min
 EtBr処理 20min
(5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ
 pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)について同様の操作を行った
 培養後の培養液1.5mLを1.5mLマイクロチューブに移した
 ↓4℃、14,000rpm、5min遠心
 ↓上澄みをデカンテーションで取り除いた
 ↓菌体ペレットを氷冷したSoltionⅠ100μLに懸濁(vortex)
 ↓SolutionⅡ200μLを加え混合
 ↓5min on ice
 ↓SolutionⅢ150μLを加え混合(vortex)
 ↓5min on ice
 ↓4℃、14,000rpm、10min遠心
 ↓上澄みを新しい1.5mLマイクロチューブに移した
 ↓等量(400μL)イソプロピルアルコールを加えた
 ↓4℃、14,000rpm、20min遠心
 ↓70%EtOHを200μL加える
 ↓4℃、14,000rpm、10min遠心
 ↓30sec 遠心乾燥
 ↓TE30μL加えてプラスミドDNAとした
(6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動
 pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ後、電気泳動を行いチェックした
<条件>
 DNA量 5μL
 電気泳動 100V 20min
 EtBr処理 20min

Results

(1) 今回作成したPMは今後使用していく予定
(2) 後日電気泳動により増幅の確認を行う
(3,4) hemH、dpsに関してははっきりとバンドが見え、増幅が確認された
(5,6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)共に明瞭なバンドが確認された
 *詳細は写真参照

Remarks

(3,4)SpeⅠが届き次第、制限酵素処理を行う
(5,6)pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のプレートからシングルコロニーをピックアップして、LB培地(1)で培養