Template:KIT-Kyoto-Augsut25
From 2010.igem.org
August 25
Time
- 9:00~21:00
Member
- 岩城,古道,竹内,吉村
- Iwaki,Furumichi,Takeuchi,Yoshimura
Purpose
- (1) 大腸菌の生存曲線を調べる(3日目) [吉村]
- (2) 大腸菌の生存曲線を調べる(1日目) [吉村]
- (3) pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0430),pSB1A2(J22005)のプレカルチャー [古道]
- (4) pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0420)をDH5αに形質転換 [古道]
- (5) dps,AcrAB-pSB6A1(K121013)のLigation
- (6) pSB3K3(J04450),pSB6A1(K121013),pSB1A2(E0240),
- pSB1AK3(I732950),pSB4A5(K193602)のプラスミド抽出
Method
- (1) 大腸菌の生存曲線を調べる
- プレートにコロニーが生えているか確認し、コロニーの数を数えた
- (2) 過酸化水素の浸透性を利用し、大腸菌の生存曲線を調べる
- 実験(1)でcontrolのプレートにコロニーが生えなかったので、違った方法でプレートを作成した
- DH5αをO.D.600=0.4~0.6になるまで培養した
- ↓培養後、LB1mlに対して、培養液を1ml加えて希釈した
- ↓希釈した培養液10μlをLBプレートにまき、37℃で1時間インキュベートした
- ↓1時間後、過酸化水素水をLBプレートの中心に20μl滴下し、
- 滴下した過酸化水素水がLBプレートに完全に浸透するまで待った
- ↓完全に浸透したのを確認し、37℃でインキュベートした(overnight)
- (3) pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0430),pSB1A2(J22005)のプレカルチャー
- pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0430),pSB1A2(J22005)の
- コロニーをピックアップしLB液体培地(+amp)に入れた
- ↓37℃で振とう培養した
- (4) pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0420),をDH5αに形質転換
- pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0420)をそれぞれ1µl取り、そこにDH5α 100µlを加え混ぜた
- ↓氷上、30min
- ↓42℃で45秒間、熱ショックを与えた
- ↓氷上、2min
- ↓SOC培地0.9mlを加えた
- ↓37℃で1時間振とう培養した
- ↓400µlずつLB(+amp)プレートに播いて37℃でインキュベートした(overnight)
- (5) dps,AcrAB-pSB6A1(K121013)のLigation
EcoRⅠ-SpeⅠで制限酵素処理したdps,AcrABと
↓ゲルのレーンには左2列にpSB6A1(K121013)を、右2列にdpsを流した
EcoRⅠ-XbaⅠで制限酵素処理したpSB6A1(K121013)に電気泳動を行い、
ゲル抽出、ライゲーションを行った
dpsは前日(24日)に制限酵素処理したものを用いた
↓pSB6A1(K121013)の制限酵素処理を行った
↓右表に従い試薬を混合し、37℃で30分間インキュベートした
↓CIAP 1μLを加えて、37℃で30分間インキュベートした
↓dpsとpSB6A1(K121013)それぞれにOrange Loading Dyeを10μLずつ加え、
30μずつ、レーンにアプライした
<試薬組成> DNAsol 30μL M buffer 5μL EcoRⅠ 1μL XbaⅠ 1μL H2O 13μL 全量 50μL
- (6) 大量培養後のアルカリミニプレップ
- 以下の5種類のベクターを用意した
- pSB3K3(J04450)
- pSB6A1(K121013)
- pSB1A2(E0240)
- pSB1AK3(I732950)
- pSB4A5(K193602)
- 菌液をチューブに入る量だけ入れた
- ↓4℃、14,000rpmで5分間遠心した
- ↓上清を捨てた後、菌液を更に追加した
- ↓4℃、14,000rpmで5分間遠心した
- ↓以上の操作を菌液がなくなるまで繰り返した
- ↓solⅠ 4mLを加え、vortexした
- ↓solⅡ 200μLを加えon ice 5min.
- ↓solⅢを150μL加えon ice 5min.
- ↓4℃、14,000rpmで10分間遠心した
- ↓イソプロパノール400μL(等量)を加えた
- ↓4℃、14,000rpmで20分間遠心した
- ↓70%EtOHを200μL加えた
- ↓4℃、14,000rpmで10分間遠心した
- ↓遠心乾燥を行った
- ↓これをTE(RNase)30μLに溶解し、冷蔵保存した
- (1) コロニー数を数えて以下の表にまとめた
H2O2濃度 0mM(control) 100nM 10nM 1nM 100pM 10pM 1pM コロニー数 0 7 147 59 0 144 289 - controlのプレートになぜかコロニーが生えなかった
- この実験では大腸菌をプレートにまく作業を7回繰り返したため、時間差が生じてしまったのが原因とみられる
- とにかくcontrolプレートに大腸菌が生えなければどうしようもないので、この結果は不採用とした
- (2) 8月26日に結果を記載した
- (3) 三本ともプレカルチャーが成功したため、8月27日の実験で使用した
- (4) pSB1A2(I13507) ,pSB1A2(E0420)のトランスフォーメーションは成功した
- よって、8月27日の実験で使用することになった
- (5) ゲル抽出に移る前にdpsのバンドが十分量検出できなかったため、
- ゲル抽出、およびLigationを行うことができなかった
- pSB6A1(K121013)のバンドははっきりと見えたが、濃度としては不十分だった
- (6) すべてのプラスミドの濃度が低かった