Template:KIT-Kyoto-Augsut13

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Revision as of 07:44, 19 September 2010

August 13

【時間】

9:00～21:00

【実験担当】

岩城,竹内,中村,吉村,足立

【実験名】

(1)　pSB3K3のトランスフォーメーション

(2)　pSB1A2,pSB6A1のアルカリミニプレップ

(3)　pSB1A2,pSB6A1の電気泳動

【実験目的】

(1)　LB(+amp)で間違えて培養していたため、LB(+kan)で再度pSB3K3のトランスフォーメーションをする

(2)　pSB1A2及びpSB6A1のプラスミド抽出

(3)　DH5αにプラスミドpSB1A2及びpSB6A1が挿入されているかのチェック

【実験内容】

(1)　pSB3K3のトランスフォーメーション

　-80℃で保存していたコンピタントセル(DH5α)を氷上で溶解した

　↓DH5α100μLに対し、pSB3K3 1μLを1.5mLエッペンに混合した

　↓on　ice　30min

　↓45℃で45sec、ヒートショックを行った

　↓on　ice　2min

　↓各チューブにSOC培地を、0.9mLずつ加えた

　↓37℃で1h、振とう培養した

　↓培養後、全量をLBプレート(+kan)に撒き、37℃でOvernight

(2)　pSB1A2,pSB6A1のアルカリミニプレップ

　培養後のpSB1A2とpSB6A1を1.5mLチューブに取った

　↓4℃、15,000rpmで5分間遠心した

　↓上澄みをデカンテーションで取り除いた

　↓菌体ペレットを氷冷したSoltionⅠ100μLに懸濁した(vortex)

　↓SolutionⅡ200μLを加え混合した(vortex不可)

　↓5min on ice

　↓SolutionⅢ150μLを加え混合した(vortex)

　↓5min on ice

　↓4℃、15,000rpm、10min遠心した

　↓上澄みを新しい1.5mLマイクロチューブに移した

　↓等量(400μL)イソプロピルアルコールを加えた

　↓4℃、15,000rpmで20分間遠心した

　↓70％EtOHを1mL加えた(vortex)

　↓4℃、15,000rpm、10分間遠心した

　↓上澄みを捨てた

　↓30秒間遠心乾燥を行った

　↓RNase in TEを30μL加えてプラスミドDNAにした

(3)　pSB1A2,pSB6A1の電気泳動

組成1(pSB1A2) 組成2(pSB6A1) XbaⅠ,PstⅠ 1μL 1μL (2)で得たpSB1A2 5μL - (2)で得たpSB6A1 - 5μL H2O 11μL 11μL H Buffer 1μL 2μL M Buffer 1μL - 計 20μL 20μL

37℃で1時間インキュベートした ↓Loading Bufferを1μLそれぞれに加え、コームに流した 　(マーカーは1kbp radderを使用した) ↓100Vで30分間電気泳動し、EtBr(10mg/mL)で染色した ↓泳動結果を写真で撮影した

【実験結果】

(1)　コロニーが２つだけ確認できた(ピンク)

(3)　pSB6A1→Bandが確認、挿入が確かめられた

翌日から組み換え大腸菌の大量培養に入る

pSB1A2→Bandが現れなかった

翌日、再度カットしなおして電気泳動を行う