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Team:KIT-Kyoto/Notebook-week11
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<li><a href="1">category1</a> | <li><a href="1">category1</a> | ||
<ul class="fxmn"> | <ul class="fxmn"> | ||
| - | <li><a href="11">【時間】 9:00～18:00 | + | <li><a href="11"> |
| + | 【時間】 9:00～18:00 | ||
| + | |||
【実験担当】岩城,福山,竹内,臼井,足立 | 【実験担当】岩城,福山,竹内,臼井,足立 | ||
| + | |||
【実験名】 | 【実験名】 | ||
| - | (1)pSB6及びpsB1(非パーツ)のプレカルチャー | + | :(1)pSB6及びpsB1(非パーツ)のプレカルチャー |
| - | (2)pGVBpttの電気泳動 | + | :(2)pGVBpttの電気泳動 |
| - | (3)psB3K3(J04450)のトランスフォーメーション | + | :(3)psB3K3(J04450)のトランスフォーメーション |
| + | |||
【実験目的】 | 【実験目的】 | ||
| - | (1)pSB6A1(K121013)及びpsB1(非パーツ)のプレカルチャー | + | :(1)pSB6A1(K121013)及びpsB1(非パーツ)のプレカルチャー |
| - | (2)pGVBpttが正しく制限酵素処理されているかどうかを確認するため | + | :(2)pGVBpttが正しく制限酵素処理されているかどうかを確認するため |
| - | (3)psB3K3(J04450)のトランスフォーメーション | + | :(3)psB3K3(J04450)のトランスフォーメーション |
| + | |||
【実験内容】 | 【実験内容】 | ||
| + | |||
(1)プレカルチャー | (1)プレカルチャー | ||
| - | DH5α-pSB6を液体LB培地(+amp)2mLで培養 | + | :DH5α-pSB6を液体LB培地(+amp)2mLで培養 |
| - | DH5α-pSB1 を液体LB培地(+amp)2mLで培養 | + | :DH5α-pSB1 を液体LB培地(+amp)2mLで培養 |
| + | |||
(2)pGVBpttの電気泳動 | (2)pGVBpttの電気泳動 | ||
| - | 〈組成〉 | + | |
| - | pGVBppt 5μL | + | :〈組成〉 |
| - | KpmI 1μL | + | ::pGVBppt 5μL |
| - | HindⅢ 1μL | + | ::KpmI 1μL |
| - | Buffer(M) 1μL | + | ::HindⅢ 1μL |
| - | H2O 11μL | + | ::Buffer(M) 1μL |
| - | 計 20μL | + | ::H2O 11μL |
| - | これを1h,37℃でインキュベート | + | ::計 20μL |
| - | ↓ | + | |
| - | Loading Buffer 1μLを加えたものと、マーカー(1kbp radder)を | + | :これを1h,37℃でインキュベート |
| - | 1% Agarose Gel のコームに流し込んだ | + | : ↓ |
| - | ↓100V,30min泳動 | + | :Loading Buffer 1μLを加えたものと、マーカー(1kbp radder)を |
| - | ↓EtBr(10mg/mL)で20min染色 | + | :1% Agarose Gel のコームに流し込んだ |
| - | 泳動結果を写真で撮影した | + | : ↓100V,30min泳動 |
| + | : ↓EtBr(10mg/mL)で20min染色 | ||
| + | :泳動結果を写真で撮影した | ||
| + | |||
(3)psB3K3にSOC 0.9mLを加えDH5αにトランスフォーメーションした | (3)psB3K3にSOC 0.9mLを加えDH5αにトランスフォーメーションした | ||
| - | ↓ | + | : ↓ |
| - | 37℃でインキュベート（Overnight）</a></li> | + | : 37℃でインキュベート（Overnight） |
| + | : | ||
| + | |||
| + | |||
| + | </a></li> | ||
</ul> | </ul> | ||
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Revision as of 13:29, 6 September 2010
