"

From 2010.igem.org

Revision as of 05:08, 6 October 2010 (view source) Matsubara3 (Talk | contribs) (→September 10) ← Older edit		Revision as of 05:17, 6 October 2010 (view source) Matsubara3 (Talk | contribs) (→September 11) Newer edit →
Line 946:		Line 946:
	== September 11 ==		== September 11 ==
-
	<div align="right"><span style="font-size:10pt;">[[#notebook|>>top]]</span></div>		<div align="right"><span style="font-size:10pt;">[[#notebook|>>top]]</span></div>
		+	'''Time'''
		+	:9：00～
		+
		+	'''Member'''
		+	:福山、古道、竹内、臼井、革島、中村
		+	:Fukuyama,Furumichi,Takeuchi,Kawashima,Nakamura
		+
		+	'''Purpose'''
		+	(1)　ライゲーション済TetR・GFPのピックアップ、ミニプレップ
		+	(2)　ライゲーション済TetR・GFPのストリーク
		+	(6)　PoxyR(GFPあり、onpsB6A1)の培養6本→アルカリミニプレップ→制限酵素処理(over night)
		+	(7)　LacZ(inverted)のPCR2本、35サイクル→制限酵素処理(over night)
		+	(8)　Promoterのゲル抽出(全種類)
		+	(9)　プロモーターレスLacZの ミニプレ→制限酵素処理
		+	(10)　pSB1A2 I13522、pSB6A1  K121013、pSB6 TetR-GFPのプレカルチャー
		+	(11)　前日にアルカリミニプレップした
		+	pSB6A1(BBa_J04450,RFP),pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less),pSB1A2(BBa_I13522,TetR)
		+	の吸光度の測定と制限酵素処理
		+	(12) ｐSB6A1（BBa_K121013:OxyR,GFP）のアルカリミニプレップ
		+	(13)AcrAB,SodA,sufA,ahpC,oxyR,yaiA,dpsの電気泳動
		+	(14)SodA,sufA,ahpC,oxyR,dpsのゲル抽出
		+	(15)SodA,sufA,ahpC,oxyR,dpsのライゲーション
		+
		+
		+	【実験内容】
		+	（1）ライゲーション済TetR・GFPのピックアップ
		+	↓
		+	4時間程37℃振とう培養した
		+	↓
		+	遠心１分（20℃、14500rpm）して集菌
		+
		+	↓
		+
		+	上清を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅡを250μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅢを350μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心５分（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	上清をカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅣを500μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心1分（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅤを700μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	滅菌水をカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	溶出液を回収
		+
		+
		+
		+	（2）amp入りLBプレートにライゲーション済TetR・GFPをストリークした
		+
		+
		+	（3）1×TAE100mlにUltrapure Agaroseを1.0g加え温めて溶かした
		+	↓
		+	ある程度冷めたらトレイに流し込み、コーム(8レーン) をさした
		+	↓
		+	固まるまで室温で放置した
		+
		+	（4）1×TAE100mlにUltrapure Agaroseを1.0g加え温めて溶かした
		+	↓
		+	ある程度冷めたらトレイに流し込み、コーム(切り出し用)をさした
		+	↓
		+	固まるまで室温で放置した
		+
		+	（5）
		+
		+	・材料
		+
		+	EtBr(エチジウムブロマイド)
		+
		+
		+	MilliQ
		+
		+	・操作
		+
		+	1．EtBr80μLとMilliQ約45μLとを混ぜ合わせる。
		+
		+	↓
		+
		+	保存容器をアルミホイルで覆い、常温で保存する。
		+
		+	（6）試験管で培養した試料をカラムなしのミニプレ処理を行いDNAを抽出した。
		+	そして、抽出後の試料にEcoRⅠ,PstⅠでの制限酵素処理を行った。
		+	組成は以下の通り
		+
		+	DNAsol  3μL
		+	EcoRⅠ  1μL
		+	PstⅠ  1μL
		+	10×H  5μL
		+	H2O  40μL
		+	Total　　  　50μL
		+
		+
		+	（7）Inverted lacZのPrimer(forward)1.5μl、Primer(Revese)1.5μlを500μlエッペンに分注した
		+	↓
		+	それぞれのエッペンに以下の組成で溶液を加えた
		+
		+	pSB1A2(BBa-I732019)各 1μL
		+
		+	10×PCR Buffer for KOD-Plus- 5μL
		+
		+	2mM d NTPs　5μL
		+
		+	2mM MgSO₄4μL
		+
		+	MilliQ 31μL
		+
		+	KOD-Plus- 1μL
		+
		+	↓
		+
		+	以下のプログラムでPCR反応を行った。
		+
		+	熱変性
		+	熱変性
		+	アニーリング
		+	伸長反応
		+	伸長反応
		+	保存
		+
		+	94℃
		+	94℃
		+	63℃
		+	75℃
		+	75℃
		+	4℃
		+
		+	2min
		+	30sec
		+	30sec
		+	30sec
		+	10min
		+	保持
		+
		+
		+	35サイクル
		+
		+
		+
		+
		+
		+	↓
		+	PCR済のInverted lacZの吸光度測定し、DNA濃度算出
		+	↓
		+	制限酵素処理
		+	次の組成で1.5mlエッペンに分注した
		+	PCR済のInverted lacZ① PCR済のInverted lacZ②
		+	DNA　40μl　　　　　　　　　　　　　DNA　40μl
		+	EcoRⅠ　1.796μl　　　　　　　　　EcoRⅠ　0.94μl
		+	SpeⅠ　　0.997μl　　　　　　　　　SpeⅠ　　0.522μl
		+	BufferH　5μl　　　　　　　　　　　　BufferH　5μl
		+	MilliQ　　2.207μl　　　　　　　　　MilliQ　　3.538μl
		+	total　50μl　　　　　　　　　　　　　　total　50μl
		+	↓
		+	37℃でインキュベート、overnihgt
		+
		+
		+	(8)AcrAB,ahpC,dps,oxyR,,SodA,sufA,yaiA過酸化水素応答性プロモーター7種類に対してカラムを使わないゲル抽出を行った。
		+
		+
		+	（9）プロモーターレスLacZの ミニプレ
		+	遠心１分（20℃、14000rpm）して集菌(菌液を使いきるまで)
		+	↓
		+
		+	上清を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、よくボルテックスした
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅡを250μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅢを350μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心５分（20℃、14000rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	上清をカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14000rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅣを500μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心1分（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅤを700μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	滅菌水をカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	溶出液を回収
		+
		+
		+
		+	プロモーターレスLacZの制限酵素処理
		+
		+	EcoRⅠ、pstⅠでカット。Total50μL
		+
		+
		+	（10）pSB1A2 I13522、pSB6A1  K121013、pSB6 TetR-GFPのプレカルチャー
		+
		+
		+
		+	プレートを４分割してそれぞれをストリーク、１つはNothingとした。
		+
		+	↓
		+
		+	37℃でover night
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+	(11)
		+	前日にアルカリモニプレップと濃縮を終えていた3試料を100倍希釈して吸光度(260nm)を測定した
		+	試料A  pSB6A1(BBa_J04450,RFP)
		+	試料B　pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less)
		+	試料C　pSB1A2(BBa_I13522,TetR)
		+	↓
		+	以下のように試料を調整した
		+
		+	試料B（μl） 試料C（μl）
		+	DNA溶液 29 29
		+	EcoRⅠ 0.15 0.8
		+	SpeⅠ 0.085
		+
		+	XbaⅠ
		+	0.89
		+	BufferH 5 5
		+	MilliQ 15.8 14.31
		+	合計 約50 約50
		+
		+	↓
		+
		+
		+
		+	37℃でインキュベート
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+	(12)
		+	遠心１分（20℃、14500rpm）して集菌
		+
		+	↓
		+
		+	上清を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅡを250μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅢを350μl加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心５分（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	上清をカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅣを500μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心1分（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	SolutionⅤを700μlカラムに加えた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	抽出液を捨てた
		+
		+	↓
		+
		+	滅菌水１００μlをカラムに入れた
		+
		+	↓
		+
		+	遠心３０秒（20℃、14500rpm）
		+
		+	↓
		+
		+	溶出液を回収
		+
		+
		+
		+
		+	(13)
		+
		+
		+	前日(10日)にEcoRⅠ-SpeⅠでカットしておいたAcrAB,SodA,sufA,ahpC,oxyR,yaiA,dpsの七種類のプロモーターに関して1%アガロースゲル(ゲル抽出用)で50V-45minの条件で電気泳動を行った。
		+
		+
		+
		+
		+	(14)
		+
		+
		+	＜方法＞
		+
		+
		+	・抽出(QIAGENのQIAquick®Gel Extraction kit(250)を使用)
		+
		+	切りだしたゲルの重さを事前に量った。
		+
		+	↓
		+
		+	ゲルの三倍量のBufferQGを加え、50℃-10minでインキュベート
		+
		+	↓
		+
		+	ゲルの溶解後、ゲルと等量のisopropanolを加え、カラムに乗せた。
		+
		+	↓cfg.10,000rpm-1min
		+
		+	抽出物を捨て、0.5mLのBufferQGを加えた。
		+
		+	↓cfg.10,000rpm-1min
		+
		+	抽出物を捨て、0.75mLのBufferPEを加えた。
		+
		+	↓cfg.10,000rpm-1min
		+
		+	抽出物を捨て、エッペンにカラムを乗せかえH2Oを37μL加えた。
		+
		+	↓cfg.10,000rpm-1min
		+
		+	内5μLを濃度測定に使用した。(H2Oを95μL加え20倍希釈とした。)
		+
		+
		+
		+	(16)
		+
		+	CFP-On pSB6（ローコピーベクター）,各種プロモーターおよび、YFP-On pSB6（ローコピーベクター）、各種プロモーターのligation
		+
		+
		+
		+	ligationはT-4lagaseを用いligation条件を以下の条件で行った。
		+
		+
		+
		+	CFP-on pSB6,各種プロモーターのligation
		+
		+	Ⅰ(insert:vector=1:2)
		+
		+
		+
		+	Insert (sufA)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  2.4μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.2μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (sodA)            6μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1.3μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.9μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (ahpC)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  2.5μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.7μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (oxyR)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  3.4μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insent (dps)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  3.6μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.2μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+
		+
		+	YFP on pSB6,各種プロモーターのligation
		+
		+	Ⅰ(insert:vector=1:2)
		+
		+
		+
		+	Insert (sufA)            6μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1.8μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.4μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (sodA)            6μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.8μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  1.4μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (ahpC)            6μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1.9μl
		+
		+	Buffer                    1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.3μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (oxyR)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  2.5μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.7μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insent (dps)              5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  2.7μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  0.5μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+
		+
		+	CFP-on pSB6,各種プロモーターのligation
		+
		+	Ⅱ(insert:vector=1:5)
		+
		+
		+
		+	Insert (sufA)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.2μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (sodA)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.4μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.8μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (ahpC)            6μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)    1μl
		+
		+	Buffer                    1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  1.2μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (oxyR)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1.4μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.8μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insent (dps)              5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  1.5μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.7μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+
		+
		+	YFP-on pSB6,各種プロモーターのligation
		+
		+	Ⅱ(insert:vector=1:5)
		+
		+
		+
		+	Insert (sufA)              5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.6μl
		+
		+	Buffer                    1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.6μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (sodA)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.3μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.9μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (ahpC)            5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.6μl
		+
		+	Buffer                    1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.6μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+	Insert (oxyR)              5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.85μl
		+
		+	Buffer                    1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                    2.35μl
		+
		+	Total                      10μl
		+
		+
		+
		+	Insent (dps)              5μl
		+
		+	Vevtor (CFP-On pSB6)  0.9μl
		+
		+	Buffer                  1μl
		+
		+	T-4ligase                0.8μl
		+
		+	MilliQ                  2.3μl
		+
		+	Total                  10μl
		+
		+
		+
		+
		+
		+	以上の条件で作成したすべてのサンプルについてトランスフォーメーションを行い大腸菌に形質転換させた。
		+
		+
		+
		+	DH5α50μlに以上のサンプル全量をそれぞれ加え混ぜた後、3min氷上で静置した。
		+
		+	↓
		+
		+	４３℃で３０秒インキュベートした後、１０分間氷上で静置した。
		+
		+	↓
		+
		+	この各サンプルをLBプレート（アンピシリン　終濃度５０μg/ml）にまき３７℃でインキュベートした。（overnight）
		+
		+
		+
		+
		+
		+	【実験結果】
		+	(1)ライゲーション済TetR・GFPのミニプレップ処理後は保存し、次回吸光度測定をした。
		+	(2)翌日生えていた。
		+
		+	（3）1％アガロースゲル　5枚作成
		+
		+	（4）切り出し用ゲル　4枚作成
		+
		+	(5)
		+	以後ゲルの切り出しで使用。
		+
		+	※作成したEtBrは使うごとに、「正」の文字を一画足す。
		+	5回切り出しを行ったEtBrは染色用とする。
		+
		+	(6)十分な量のDNAを抽出できたので予定通り、制限酵素処理を行った。
		+
		+
		+	(7)
		+	PCR済のInverted lacZ①吸光度(100倍希釈)
		+	0.094
		+	0.090
		+	0.089
		+	0.091
		+	0.085
		+	平均　0.0898
		+	DNA濃度：0.0898×100×50＝4.49×10²(µl/ml)
		+	PCR済のInverted lacZ①吸光度(100倍希釈)
		+	0.050
		+	0.046
		+	0.048
		+	0.050
		+	0.041
		+	平均　0.0470
		+	DNA濃度：0.0470×100×50＝2.35×10²(µl/ml)
		+
		+	制限酵素処理後はDNA抽出を行う。
		+
		+
		+	(8)AcrAB,ahpC,dps,oxyR,,SodA,sufA,yaiAのうちAcrAB,ahpC,sufAがゲル抽出に成功した。
		+	ゲル抽出に成功した試料の濃度は以下の通り
		+
		+	AcrAB  ahpC  sufA
		+	濃度  28 ng/μL  1238 ng/μL  640 ng/μL
		+
		+
		+
		+
		+	(9) プロモーターレスLacZの ミニプレ
		+
		+	Sample1(1/20)
		+	Sample2(1/20)
		+	Sample3(1/200)
		+
		+	OD260
		+	0.546
		+	0.210
		+	0.072
		+
		+	DNA量
		+	546ng/μL
		+	210ng/μL
		+	720ng/μL
		+
		+	全量
		+	90μL
		+	95μL
		+	50μL
		+
		+
		+
		+	(10)
		+	翌日生えていた。
		+
		+	(11)    吸光度（260nm）の測定結果を示す
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+	試料A 試料Ｂ 試料Ｃ
		+
		+	0.004 0.01 0.057
		+
		+	0.002 0.01 0.05
		+
		+	0.007 0.01 0.053
		+
		+	0.01 0.011 0.054
		+
		+	0.004 0.011 0.062
		+	平均 0.0054 0.0104 0.0552
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+	試料A;pSB1A2(BBa_I13522,TetR)→非常に薄くて使えないことが分かったので破棄
		+	試料B;ｐSB6A1(BBa_J04450,RFP)→薄かったけれどとりあえず制限酵素処理をした
		+	試料C;pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less)→薄かったけれどとりあえず制限酵素処理をした
		+
		+	(12)
		+	まだ濃度が分からない状態。あす以降に吸光度を測定する。
		+
		+	(13)
		+
		+	AcrABはゲル抽出が可能な量を得られなかった。これはPCRがうまくいっていなかったと考えられる。また、yaiAはアガロースゲルのコームが貫通していたため溶液が流れ出てしまい、ゲル抽出が不可能だった。
		+
		+	残りの五つに関しては十分量得られたのでゲル抽出に移った。
		+
		+
		+	(14)
		+
		+
		+
		+	各DNA濃度
		+
		+
		+
		+	・SodA
		+
		+	1 ; 0.021
		+
		+	2 ; 0.021
		+
		+	3 ; 0.022
		+
		+	4 ; 0.030
		+
		+	5 ; 0.022
		+
		+	Ave ; 0.0232
		+
		+
		+
		+
		+	・sufA
		+
		+	1 ; 0.052
		+
		+	2 ; 0.060
		+
		+	3 ; 0.053
		+
		+	4 ; 0.052
		+
		+	5 ; 0.052
		+
		+	Ave ; 0.0538
		+
		+
		+
		+	・ahpC
		+
		+	1 ; 0.055
		+
		+	2 ; 0.053
		+
		+	3 ; 0.055
		+
		+	4 ; 0.055
		+
		+	5 ; 0.056
		+
		+	Ave ; 0.0548
		+
		+
		+
		+	・oxyR
		+
		+	1 ; 0.077
		+
		+	2 ; 0.078
		+
		+	3 ; 0.078
		+
		+	4 ; 0.071
		+
		+	5 ; 0.077
		+
		+	Ave ; 0.0762
		+
		+
		+
		+	・dps
		+
		+	1 ; 0.072
		+
		+	2 ; 0.093
		+
		+	3 ; 0.091
		+
		+	4 ; 0.080
		+
		+	5 ; 0.074
		+
		+	Ave ; 0.082
		+
		+	(15)
		+
		+	次の日(12日)にコロニーがはえていた。
		+
		+	コロニー数は非常に少ない。これは時間の関係上回復培養を行っていなったためでると考えられる。
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+
		+	【考察】
		+	(8)4つの試料のゲル抽出が成功しなかったのはミニプレ後の試料のDNA濃度が不十分であったためであると考えられる。

---

Revision as of 05:17, 6 October 2010

Contents 1 September 5 2 September 6 3 September 7 4 September 8 5 September 9 6 September 10 7 September 11

September 5

Time

9：30～

Member

岩城、竹内、吉村

Iwaki,Takeuchi,Yoshimura

Purpose

(1)　前日にシングルコロニーピックアップをしたpSB1C3(J04450)を

制限酵素処理を行うことにより、目的プラスミドの挿入を確認した

(2)　プロモーター挿入用のpSB6A1(K121013),pSB1A2(I13507)

インサートを切り出してI13507の挿入用のpSB6A1(K121013)の制限酵素処理とゲル抽出

(3)　ライゲーションとトランスフォーメーション

Method

(1)　pSB1C3のプラスミド抽出と制限酵素処理による確認

　前日に2つのシングルコロニーをピックアップし2 mlのLB培地(+Cam)で37℃で一晩培養した

　↓1.5 mlをチューブに採った

　↓25℃、14,500rpmで1分間遠心して集菌した

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓25℃、13,000rpmで5分間遠心した

　↓上清をカラムに入れた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓カラムを新しいチューブに乗せ換えた

　↓滅菌水を100 µlカラムに入れた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　それぞれ10 µlを別のチューブに採った

　↓H bufferを5 µl加えた

　↓蒸留水を34 µl加えた

　↓EcoRⅠとPstⅠを0.5 µlずつ加えた

　↓37℃で1.5時間インキュベートした

　↓1 %ゲルを用いて、100 Vで25分間電気泳動した

　↓20分間EtBrで染色した

　↓紫外線を照射し写真を撮影した

(2)　pSB6A1(K121013)の制限酵素処理とゲル抽出

PCR用のpSB6A1,RFP,pSB6A1を右表1,2の組成で平常通り制限酵素処理した 　↓右表3,4の組成でゲルにアプライした 　↓50Vで30分間電気泳動した 　↓UVを照射してゲルを切り出した 　↓H2O　400μLを加えた 　↓65℃　40minでヒートブロック 　↓Phe等量加えて　vortex 　↓cfg.　14500rpm　5min　25℃ 　↓上清を新チューブへ 　↓Phe/Chl等量　voltex　　 　↓cfg. 14500rpm　5min　25℃ 　↓上清を新チューブへ 　↓3M CH3COONa　50μLを加えた 　↓イソプロ　800μLを加えた 　↓cfg.　14500rpm　10min　4℃ 　↓上清除き、70％EtOH 150μL 　↓cfg.　14500rpm 5min 4℃ 　↓遠心乾燥機　5min 　↓MilliQ　10μLを加えた			表1: PCR用pSB6A1 DNAsol 262μL EcoRⅠ 4μL XbaⅠ 4μL Buffer M 30μL total 300μL			表2: RFP,pSB6A1 DNAsol 85μL EcoRⅠ 2.5μL PstⅠ 2.5μL Buffer H 10μL total 100μL
			表3: PCR用のpSB6A1 DNA 300μl Orange Loading Dye 50μl			表4: RFP,pSB6A1 DNA 100μl Orange Loading Dye 20μl

(3)　ライゲーションとトランスフォーメーション

　コンピテントセルにDNAを入れた

　↓20分間氷冷した

　↓43℃のウォーターバスに45秒間いれた

　↓5分間氷冷した

　↓SOC培地を900μl加えた

　↓20分間,37℃のインキュベーターに入れた

　↓13000rpm,4℃,1分間遠心した

　↓培養液を少し捨て量を減らし、ピペッティングした

　LBプレートにまき、37℃のインキュベーターに入れてovernight

Results

(1)　以下のようにサンプルを泳動した

レーン1	1Kb Maker
レーン2	コロニー1から抽出したプラスミド
レーン3	コロニー1から抽出したプラスミドを制限酵素処理したもの
レーン4	コロニー2から抽出したプラスミド
レーン5	コロニー2から抽出したプラスミドを制限酵素処理したもの

レーン2と4で同じ長さのバンドが確認できた

またレーン3と5では2本のバンドが確認でき、3と5で長さに違いはなかった

(2)　RFPのバンドが見られなかった

(3)　全てのプレートでコロニーの生育が見られた

Consideration

(1)　pSB1C3はベクター2072bp・インサート1069bpであり、

インサート部分の両端に今回使用した制限酵素で切断できる部位をもつので

電気泳動の結果と照らし合わせるとどちらのコロニーも目的プラスミドの挿入がなされていると考えられる

これを用いてマスタープレート・グリセロールストックの作成をする

(2)　制限酵素処理に失敗したと思われる

September 6

Time

8:30～20:30

Member

岩城

Iwaki

Purpose

(1)　pSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430), pSB6A1(K121013)のプラスミドを抽出する

(2)　pSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430), pSB6A1(K121013)を制限酵素処理する

(3)　pSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430), pSB6A1(K121013)のゲル抽出

(4)　RFP・CFP・YFPをpSB1A2からpSB6A1に乗せ換える

AcrAB,SodA,yaiAの3種のプロモーターをpSB6A1(K121013)のRBSの前に挿入する

Method

(1)　プラスミド抽出

　pSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430), pSB6A1(K121013)の

　4種のプラスミドの抽出をした(カラムを使用したミニプレップ)

(2)　制限酵素処理

　(1)で抽出したpSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430)をEcoRⅠとPstⅠの2種の制限酵素で切断した

　(1)で抽出したpSB6A1(K121013)を2つに分け、RFP,CFP,YFP用とpromoter用とした

　RFP,CFP.YFP用をEcoRⅠとPstⅠの2種の制限酵素で切断した

　promoter用をEcoRⅠとXbaⅠの2種の制限酵素で切断した

(3)　ゲル抽出

　(2)で制限酵素処理したpSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430)の3種の

　インサートと pSB6A1(K121013)のベクターのゲル抽出を行った(青ゲル)

(4)　LigationとTrans formation

　(3)でゲル抽出したpSB1A2(I13507), pSB1A2(E0420), pSB1A2(Eo430)の3種の

　インサートと pSB6A1(K121013)(RFP,CFP,YFP用)のLigationを行った

　前日にゲル抽出済みの AcrAB,SodA,yaiAの3種のプロモーターと

　(3)でゲル抽出したpSB6A1(K121013)(promoter用)のLigationを行った　

　LigationしたものをTFして、プレートを37℃・overnightでインキュベートした

Results

ゲル抽出の際にpSB1A2(I13507)のバンドが確認できなかったため抽出できなかった

それ以外に関してはTFまで完了した

以下の計5種

　　pSB6A1(E0430)

　　pSB6A1(E0420)

　　pSB6A1(K362007)

　　pSB6A1(K362011)

　　pSB6A1(K362013)

Consideration

試験管3本分ではゲル抽出でバンドがでない可能性が高い

確実にゲル抽出するためには5本以上の試験管での培養が必要と考えられる

September 7

Time

9：00～

Member

岩城、福山、竹内、中村

Iwaki,fukuyama,Takeuchi,Nakamura

Purpose

(1)　DH5α(pSB6A1(promoter less,CFP)),DH5α(pSB6A1(promoter less,RFP)),

DH5α(pSB6A1(promoter less,YFP)),DH5α(pSB6A1(SodA,GFP)),

DH5α(pSB6A1(yaiA,GFP))のコロニーをピックアップ [福山]

(2)　AcrABのフェノール/クロロホルム処理と制限酵素処理　[福山]

(3)　pSB1A2(BBa_I13507)のアルカリミニプレップと濃縮　[福山]

(4)　AcrABのPCR　[中村]

(5)　pSB1A2(I13507)のアルカリミニプレップ

(6)　lacZのアルカリミニプレップ

Method

(1)　コロニーをピックアップ

　DH5α(pSB6A1(promoter less,CFP))

　DH5α(pSB6A1(promoter less,RFP))

　DH5α(pSB6A1(promoter less,YFP))

　DH5α(pSB6A1(SodA,GFP))

　DH5α(pSB6A1(yaiA,GFP))

　それぞれのコロニーを32個ずつピックアップし、LBプレート(+amp)にストリークした

　↓37℃でインキュベートした

(2)　AcrABのフェノール/クロロホルム処理と制限酵素処理

　PCR処理済みのAcrAB溶液400μlにMilliQ200μl加えた

　↓フェノールクロロホルム溶液を1.2mlほど加えてピペッティングし、vortexした

　↓室温、14,500rpmで5分間遠心した

　↓上清を回収し、これに2-プロパノールを1.2mlほど加えた

　↓4℃、14,500rpmで10分間遠心した

　↓上清を捨て、70％エタノールを1.2mlほど加えた

　↓4℃、14,500rpmで3分間遠心した

　↓上清を捨てた

　↓遠心乾燥機で乾燥した

　↓MilliQを30μl加えた

　↓5μlとって2％アガロースゲル電気泳動で確認した(300bpあたりにバンドが見えた)

　↓100倍希釈で吸光度を計測した

　↓濃縮したプラスミド溶液24μlに下表2に従い各試薬を加えた

　↓調整した試料を37℃で一晩インキュベートした

表1: 吸光度計測結果 AD260 0.071 0.069 0.069 0.07 0.071 平均 0.07

表2: 試薬組成 AcrAB 24μl EcoRⅠ 0.84μl PstⅠ 0.933μl H Buffer 2.6μl MilliQ 21.6μl 全量 約50μl

(3)　pSB1A2(BBa_I13507)のアルカリミニプレップと濃縮

　DH5α(pSB6A1(promotor less,RFP))を1.5mlエッペンチューブにうつした

　↓20℃、14,500rpmで1分間遠心して集菌した

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓20℃、14,500rpmで5分間遠心した

　↓上清をカラムに入れた

　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓20℃、14,500rpmで1分間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水をカラムに入れた

　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心した

　↓溶出液を回収した

　↓溶出液量に対して酢酸ナトリウムを1/10倍、イソプロパノールを等量加えて混ぜた

　↓4℃、14,000rpmで10分間遠心した

　↓上清を捨て、70％エタノールを各エッペンに800μlずつ加えた

　↓4℃、14,000rpmで5分間遠心した

　↓上清を捨て、遠心乾燥機で乾燥した

　↓MilliQを30μl加えた

(4)　AcrABのPCR

　下表1,2に示した試薬組成、設定に従ってPCRを行った

組成 AcrABM 1.5μL Buffer 5μL dNTPs 5μL KOD-Plus 1μL MgSO4 4μL 鋳型DNA 0.5μL H2O 33μL Total 50μL

PCR設定 熱変性 熱変性 アニーリング 伸長反応 伸長反応 保存 94℃ 94℃ 60.2℃ 68℃ 68℃ 4℃ 5min 15sec 30sec 20sec 2min ∞ 30サイクル

(5)　pSB1A2(I13507)のアルカリミニプレップ

　pSB6A1(I13507), pSB6A1(E0420), pSB6A1(E0430)のカラム使用アルカリミニプレップ

　25℃、14,500rpmで1分間遠心して集菌した

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓25℃、13,000rpmで5分間遠心した

　↓上清をカラムに入れた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓25℃、13,000rpmで30秒間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水を100 µlカラムに入れた

　↓電気泳動した

(6)　lacZのアルカリミニプレップ

　集菌後、水分を十分に取り除き、SolutionⅠ250μLを加えた

　↓vortexにより混合した後、SolutionⅡ250μLを加え、上下に2，3度転倒させて混ぜた

　↓SolutionⅢ350μLを加え、よく混合した

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　5min

　↓上清をカラムに移した

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　30sec　カラム下部の液を捨てた

　↓SolutionⅣ500μLを加えた

　↓cfg.　20℃　13,000rpm　1min　カラム下部の液を捨てた

　↓SolutionⅤ700μLを加えた

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　1min×２

　↓酢酸ナトリウム50μL、イソプロパノール800μLを加えた

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　10min

　↓上清を除いた

　↓70%EtOHをエッペンの8分目まで加えた

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　5min

　↓遠心乾燥　2min

　↓滅菌水100μLに溶かした

Results

(1)　翌日プレート上で各プラスミドを持つ大腸菌が培養出来ているのを確認した

(2)　制限酵素処理が上手くいったかどうかは確認できていない

翌日以降、電気泳動によって確認し、問題がなければゲル抽出する

(3)　どれくらい各プラスミドが回収できたのかはまだ分からない状態である

翌日以降、各プラスミド溶液の吸光度をはかり、制限酵素処理を行う

(4)　ゲル抽出をするのに十分な濃度の試料を得ることができた。

(5)　バンドは検出できなかった、iGEMの製作した試薬には問題ありと考えられる

(6)　lacZの吸光度は0,1468（×1/100）でDNA濃度は734g/μLであった

　　　→冷蔵保存

September 8

Time

9：00～

Member

岩城、福山、古道、竹内、中村

Iwaki,Fukuyama,Furumichi,Takeuchi,Nakamura

Purpose

(1)　pSB1A2(I13522),pSB1A2(E0420),pSB1A2(E0430)のアルカリミニプレップと濃縮

(2)　pSB6A1（E0420）の培養

(3)　SodA,OxyR,yaiAのPCR

(4)　PCR済のSodA,OxyR,yaiAのフェノールクロロホルム処理

(5)　pSB1C3のイソプロ沈

Method

(1)　pSB1A2(I13522),pSB1A2(E0420),pSB1A2(E0430)のアルカリミニプレップと濃縮

　4時間ほどLB液体培地で培養した各E.Coliをそれぞれ1.5mlエッペンに8割ほど移した

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)して集菌

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓遠心5分(20℃、14,500rpm)

　↓上清をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓遠心30秒(20℃、14500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓溶出液を回収

　↓酢酸ナトリウムとイソプロパノールを溶出液量に対して

　　それぞれ1/10倍、等量加えてまぜた

　↓遠心10分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、70％エタノールを各エッペンに800μlずつ加えた。

　↓遠心5分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、遠心乾燥機で乾燥

　↓MilliQを各種プラスミドにつき30μlずつ加えた

(2)　pSB6A1（E0420）の培養

　前日にAmp入りLB寒天培地にストリークしたpSB6A1(E0420)を

　2mlのLB液体培地が入った試験管6本に一部うつして　　　　　

　振とう培養した

(3)　SodA,OxyR,yaiAのPCR

　プライマー(Forward)、プライマー(Reverse)を

　すでにMixしたプライマー(SodA, OxyR,yaiA)を各1.5μLずつ、500μLのエッペンに入れた

　↓それぞれのエッペンに下表1の組成で溶液を加えた

　↓下表2,3のプログラムでPCR反応を行った

　↓PCR産物を電気泳動にかけた

表1: 試薬組成
テンプレートDNA(DH5α)	各0.5μL
10×PCR Buffer for KOD-Plus-	5μL
2mM d NTPs	5μL
2mM MgSO4	4μL
MilliQ	33μL
KOD-Plus-	1μL
total	50μL

表2: SodA,OxyRのPCR反応 熱変性 熱変性 アニーリング 伸長反応 伸長反応 保存 94℃ 94℃ 62.7℃ 68℃ 68℃ 4℃ 2min 15sec 30sec 1min 2min 保持 30サイクル

表3: yaiAのPCR反応 熱変性 熱変性 アニーリング 伸長反応 伸長反応 保存 94℃ 94℃ 60.4℃ 68℃ 68℃ 4℃ 2min 15sec 30sec 38sec 2min 保持 30サイクル

(4)　PCR済のSodA,OxyR,yaiAのフェノールクロロホルム処理

　PCR済のSodA, OxyR,yaiAにそれぞれ200µlずつ滅菌水を加えた

　↓フェノールクロロホルム(φ OH/CIAA)200µl加えた

　↓4℃、14,000rpmで10min遠心した

　↓上清を回収しそれにクロロホルムイソアミルアルコール(CIAA)を200µl加えボルテックスした

　↓4℃、14,000rpmで10min遠心した

　↓上清を回収しそれに3M CH₃COONaを50µl加え混ぜた

　↓イソプロパノール0.5ml加えて混ぜ4℃、14,000rpmで20min遠心した

　↓上澄みを捨て70％エタノール200µl加え4℃、14,000rpmで10min遠心した

　↓上澄みを捨てて乾燥させた

　↓滅菌水を30µl加えた

　↓冷蔵保存した

(5)　pSB1C3のイソプロ沈

　TEに溶かした状態のpSB1C3ベクター50μLに、CH₃COONa50μL、イソプロパノール800μLを加えた

　↓cfg.　25℃　13,000rpm　15min

　↓上清を捨てた

　↓70%EtOH800μLを加えた

　↓cfg.　25℃　14,500rpm　5min

　↓EtOHを除いた

　↓遠心乾燥　2min

　↓滅菌水30μLに溶かした

Results

(1)　まだどれほどの量でプラスミドが回収できたのかは分からない

(2) 培養に成功していれば明日にもアルカリミニプレップを行う予定

(3)　PCR産物を電気泳動にかけた結果、すべて、バンドが検出されたので、今後使用するものとする

(4)　実験(3)で得られたPCR産物のクロロホルム処理を行い冷蔵保存した

これを次回の実験に用いる(制限酵素処理など)

(5)冷蔵保存

September 9

Time

9：00～

Member

竹内、中村、吉村

Takeuchi,nakamura,Yoshimura

Purpose

(1)　pSB6A1(E0420),pSB6A1(I13507)のプラスミド抽出　[吉村]

(2)　(1)と前日(9/8)にプラスミド抽出した

pSB6A1(E0420),pSB6A1(E0430),pSB1A2(R0040)のゲル抽出　[吉村]

(3)　oxyR、sodA、yaiAの吸光度測定　[中村]

Method

(1)　pSB6A1(E0420),pSB6A1(I13507)のプラスミド抽出

　pSB6A1(E0420),pSB6A1(I13507)を1.5mlエッペンチューブにうつした

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)して集菌

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓遠心5分(20℃、14,500rpm)

　↓上清をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓溶出液を回収

　↓CH₃COONaとイソプロパノールを

　　溶出液量に対してそれぞれ1/10倍、等量加えてまぜた

　↓遠心10分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、70％エタノールを各エッペンに800μlずつ加えた

　↓遠心5分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、遠心乾燥機で乾燥

　↓MilliQを30μl加えた

(2)　pSB6A1(E0420),pSB6A1(E0430),pSB1A2(R0040)のゲル抽出

　今回は青ゲルを使わずにUV照射でバンドの位置を確認してゲル抽出を行う方法をとった

　DNAを下表1,2,3のように制限酵素処理した

　↓3時間,37℃でインキュベート

　↓アガロースゲルに下表4の全量をapplyした

　↓50V,50minで電気泳動した。

　↓20min EtBrに浸した

　↓暗室でUVをゲルに照射し、バンドの位置を確認してゲルを切り出した

表1: CFP DNA 40μl EcoRⅠ 1.5μl XbaⅠ 1.5μl M Buffer 5μl milliQ 2μl total 50μl

表2: RFP,YFP DNA 30μl EcoRⅠ 1.5μl XbaⅠ 1.5μl M Buffer 5μl milliQ 12μl total 50μl

表3: TetR DNA 30μl EcoRⅠ 1.5μl PstⅠ 1.5μl H Buffer 5μl milliQ 12μl total 50μl

表4: 試薬組成 Marker(1kb) 3μl Loadiing Buffer 10μl DNA 全量

(3)　oxyR、sodA、yaiAの吸光度測定

冷蔵保存されていたoxyR、sodA、yaiA on pSB6A1をそれぞれ、100倍希釈で吸光度測定した

Results

(2,3)　CFP,YFP,TetRはバンドが見え、切り出しに成功した

　⇒冷蔵庫に保存、翌日のLigationに使用する

　RFPはバンドが見えなかった

　⇒ミニプレの必要あり

(4)　oxyR、sodA、yaiAの吸光度測定結果(100倍希釈)

	吸光度	DNA濃度
oxyR	0.018(5回平均)	90ng/μL
sodA	0.058(5回平均)	290ng/μL
yaiA	0.029(5回平均)	145ng/μL

September 10

Time

9：00～

Member

福山、竹内、臼井、吉村

Fukuyama,Takeuchi,Usui,Yoshimura

Purpose

(1)　pSB1A2(I13522),pSB1A2(J04450)の培養　[臼井]

(2)　pSB1A2(E0420),pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0430)とpSB1A2(R0040)のライゲーション　[吉村]

(3)　ahpC,sufAの活性確認　[臼井]

(4)　全プロモーター(予備は除く)の制限酵素処理　[臼井]

(5)　pSB1A2(I13522),pSB6A1(J04450),pSB1A2(I13522)のアルカリミニプレップ、濃縮　[福山]

(6)　OxyRの逆向きのプロモーター活性を調べるためにInverted LacZをPCRにより作成する　[吉村]

Method

(1)　pSB1A2(I13522),pSB6A1(J04450)の培養

　pSB1A2(I13522),pSB1A2(J04450)をマスタープレートより白金耳でひっかき、

　LB(+amp)の培地3mLで各3本ずつ37℃で培養した

(2)　pSB1A2(E0420),pSB1A2(I13507),pSB1A2(E0430)とpSB1A2(R0040)のライゲーション

[1] CFP,RFP,YFP,TetR-GFPのDNAのゲルからの抽出

　切りだしたゲルを入れたエッペンに400μlのmilliQを入れた

　↓65℃でゲルを溶かした

　↓フェノールをエッペンの8割くらいまでいれて、vortexした

　↓14,500rpm,5min,4℃で遠心した

　↓上清を回収し、フェノールクロロホルムをエッペンの8割くらいまで加えた

　↓14,500rpm,5min,4℃で遠心した

　↓上清を回収し、イソプロパノール 800μl,CH₃COONa 50μlを加えた

　↓14,500rpm,10min,4℃で遠心した

　↓70％EtOH 200μlを加えた

　↓14,500rpm,3min,4℃で遠心した

　↓遠心乾燥器にかけた

　↓30μlのmilliQに溶かした後吸光度を測定しDNA濃度を調べた

[2] pSB6A2(k121013)とpSB1A2(I13522)のligation

　ligationはT-4ligaseを用いて以下の条件で行った

A(insert:vector=1:2) Insert(TetR-GFP) 1μl Vevtor(pSB6) 7.8μl Buffer 1μl T-4ligase 1μl MilliQ 0μl Total 10.8μl

B(insert:vector=1:10) Insert(TetR-GFP) 1μl Vevtor(pSB6) 4.2μl Buffer 1μl T-4ligase 1μl MilliQ 3μl Total 10μl

　A、B両サンプルをそれぞれ16℃で1時間インキュベートした

　以上の2サンプルについては以下の条件でトランスフォーメーションを行った

　　DH5α50μlに以上の2サンプル全量を加え混ぜた後、30分間氷上で静置した

　　↓43℃で40秒インキュベートした後、10分間氷上で静置した

　　↓この各サンプルをLBプレート(+amp　終濃度50μg/ml)にまき37℃でインキュベートした(overnight)

(3)　ahpC,sufAの活性確認

　ahpC,sufAに関して100倍希釈の吸光度5回測定し、平均値より各濃度を算出した

ahpC 1回目 0.211 2回目 0.210 3回目 0.204 4回目 0.200 5回目 0.198 Ave 0.2046 濃度1023ng/μL

sufA 1回目 0.161 2回目 0.164 3回目 0.165 4回目 0.160 5回目 0.159 Ave 0.1618 濃度809ng/μL

(4)　全プロモーター(予備は除く)の制限酵素処理

　ahpC(全量240μL),AcrAB(全量45μL),dps(全量195μL),SodA(全量135μL),

　sufA(全量240μL),oxyR(全量45μL),yaiA(全量135μL)の七種類のプロモーターに関して、

　濃縮を以下の手順で行い、制限酵素処理を行った

[濃縮]

　DNA溶液の全量をxμLとして、DNA溶液に1/10x μL　3M CH₃COONa,x μL　isopropanolを加えた

　↓cfg.14000rpm,20min,4℃

　↓上清を捨て、70%EtOHを加えた

　↓cfg.14000rpm,10min,4℃

　↓上清を捨て遠心乾燥 30sec.

　↓それぞれのDNAにH₂O 30μLを加えた

[制限酵素処理]

＜組成＞
DNAサンプル	30μL
10×H-Buffer	4μL(1×として使用)
EcoRⅠ	0.4μL
SpeⅠ	0.2μL
H2O	5.4μL
Total	40μL

　これを37℃,overnightで培養した

(5)　pSB1A2(I13522),pSB6A1(J04450),pSB1A2(I13522)のアルカリミニプレップ、濃縮

pSB1A2(I13522),pSB6A1(J04450),pSB1A2(I13522)を

それぞれ別々に1.5mlエッペンチューブにうつした

　↓遠心１分（20℃、14500rpm）して集菌

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓遠心5分(20℃、14,500rpm)

　↓上清をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水をカラムに入れた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓溶出液を回収

　↓CH₃COONaとイソプロパノールを溶出液量に対して、それぞれ1/10倍、等量加えてまぜた

　↓遠心10分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、70％エタノールを各エッペンに800μlずつ加えた

　↓遠心5分(4℃、14,000rpm)

　↓上清をすて、遠心乾燥機で乾燥

　↓TE(10μlTris-HCl pH8.0/1mM EDTA)をそれぞれ30μlずつ加え、冷蔵庫で保管した

(6)　OxyRの逆向きのプロモーター活性を調べるためにInverted LacZをPCRにより作成する

[1]Inverted LacZ 作成のためのPCR

　鋳型DNAとしてiGEMで登録されているpSB1A2(I732019)を用いた

　PCRの条件は以下の条件で行った

Sample A 鋳型DNA(810ng/ul) 0.5ul MgSO4 1ul dNTP 2ul KODplus 0.5ul Primer(forward) 0.5ul Primer(Reverse) 0.5ul Buffer 2ul MilliQ 13ul Total 20ul

Sample B 鋳型DNA(810ng/ul) 0.5ul MgSO4 2ul dNTP 2ul KODplus 0.5ul Primer(forward) 0.5ul Primer(Reverse) 0.5ul Buffer 2ul MilliQ 12ul Total 20ul

PCR反応 熱変性 熱変性 アニーリング 伸長反応 伸長反応 保存 94℃ 94℃ 63℃ 75℃ 75/TD> 4℃ 2min 30sec 30sec 30sec 10min 保持 35サイクル

　合成したプライマーを以下に示した

Primer(forward)	5’-CAGGAATTCGCGGCCGCTTCTAGTATAAACGCAGAAAGGCCCA
Primer(Reverse)	5’-ACGTACTAGTAGCGGCCGCTGCAGAAAGAGGAGAAATACTAGAT

　以上の条件によりPCRで増幅させたサンプルを電気泳動し、増幅の確認を行った

Results

(1)　翌日、培養の成功を確認した

(2) それぞれのDNA濃度を以下にまとめた

　　　CFP 280ng/μl

　　　YFP 450ng/μl

　　　TetR－GFP 400ng/μl

翌日コロニーができていた

(3) 濃度の測定で十分量と判断し、以後の実験に使用した

(4) 翌日11日に結果記載

(5) どれくらい各プラスミドが回収できたのかはまだ分からない状態である

明日以降、各プラスミド溶液の吸光度をはかり、制限酵素処理を行う

(6) Ⅰのサンプルではバンドがみられなかったが、Ⅱのサンプルではバンドが見えた

　　　⇒Ⅱのサンプルでバンドが見られたことから、次回からPCRするにはⅡの条件で行うのがよい

TetR-GFPのインサートが937bpなので、今回得られたバンドは少しそれより長いものと考えられる

急ぎなのでこのまま使用するが、本来ならカットチェックを行う必要がある

September 11

Time

9：00～

Member

福山、古道、竹内、臼井、革島、中村

Fukuyama,Furumichi,Takeuchi,Kawashima,Nakamura

Purpose (1)　ライゲーション済TetR・GFPのピックアップ、ミニプレップ (2)　ライゲーション済TetR・GFPのストリーク (6)　PoxyR(GFPあり、onpsB6A1)の培養6本→アルカリミニプレップ→制限酵素処理(over night) (7)　LacZ(inverted)のPCR2本、35サイクル→制限酵素処理(over night) (8)　Promoterのゲル抽出(全種類) (9)　プロモーターレスLacZの ミニプレ→制限酵素処理 (10)　pSB1A2 I13522、pSB6A1 K121013、pSB6 TetR-GFPのプレカルチャー (11)　前日にアルカリミニプレップした pSB6A1(BBa_J04450,RFP),pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less),pSB1A2(BBa_I13522,TetR) の吸光度の測定と制限酵素処理 (12) ｐSB6A1（BBa_K121013:OxyR,GFP）のアルカリミニプレップ (13)AcrAB,SodA,sufA,ahpC,oxyR,yaiA,dpsの電気泳動 (14)SodA,sufA,ahpC,oxyR,dpsのゲル抽出 (15)SodA,sufA,ahpC,oxyR,dpsのライゲーション

【実験内容】 （1）ライゲーション済TetR・GFPのピックアップ 　　　　　↓ 　　4時間程37℃振とう培養した 　　　　　↓ 　　遠心１分（20℃、14500rpm）して集菌

　　　　　↓

　　上清を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　　　　　↓

　　SolutionⅡを250μl加えた

　　　　　↓

　　SolutionⅢを350μl加えた

　　　　　↓

　　遠心５分（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　上清をカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心1分（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　滅菌水をカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　溶出液を回収

（2）amp入りLBプレートにライゲーション済TetR・GFPをストリークした

（3）1×TAE100mlにUltrapure Agaroseを1.0g加え温めて溶かした 　　　　↓ 　　ある程度冷めたらトレイに流し込み、コーム(8レーン) をさした 　　　　↓ 　　固まるまで室温で放置した

（4）1×TAE100mlにUltrapure Agaroseを1.0g加え温めて溶かした 　　　　↓ 　　ある程度冷めたらトレイに流し込み、コーム(切り出し用)をさした 　　　　↓ 　　固まるまで室温で放置した

（5）

・材料

EtBr(エチジウムブロマイド)

MilliQ

・操作

1．EtBr80μLとMilliQ約45μLとを混ぜ合わせる。

↓

保存容器をアルミホイルで覆い、常温で保存する。

（6）試験管で培養した試料をカラムなしのミニプレ処理を行いDNAを抽出した。 そして、抽出後の試料にEcoRⅠ,PstⅠでの制限酵素処理を行った。 組成は以下の通り

DNAsol  3μL 
EcoRⅠ   1μL 
PstⅠ  1μL 
10×H   5μL 
H2O  40μL 

Total　　 　50μL

（7）Inverted lacZのPrimer(forward)1.5μl、Primer(Revese)1.5μlを500μlエッペンに分注した 　　　　↓ それぞれのエッペンに以下の組成で溶液を加えた

pSB1A2(BBa-I732019)各 1μL

10×PCR Buffer for KOD-Plus- 5μL

2mM d NTPs　5μL

2mM MgSO₄4μL

MilliQ 31μL

KOD-Plus- 1μL

　　　　　　　　　　↓

以下のプログラムでPCR反応を行った。

熱変性

熱変性
アニーリング
伸長反応
伸長反応
保存

94℃

94℃
63℃
75℃
75℃
4℃

2min

30sec
30sec
30sec
10min
保持


35サイクル
 
 

↓ PCR済のInverted lacZの吸光度測定し、DNA濃度算出 ↓ 制限酵素処理 次の組成で1.5mlエッペンに分注した PCR済のInverted lacZ① PCR済のInverted lacZ②　 　DNA　40μl　　　　　　　　　　　　　DNA　40μl 　EcoRⅠ　1.796μl　　　　　　　　　EcoRⅠ　0.94μl 　SpeⅠ　　0.997μl　　　　　　　　　SpeⅠ　　0.522μl 　BufferH　5μl　　　　　　　　　　　　BufferH　5μl 　MilliQ　　2.207μl　　　　　　　　　MilliQ　　3.538μl　 　　total　50μl　　　　　　　　　　　　　　total　50μl 　　　　　↓ 37℃でインキュベート、overnihgt

(8)AcrAB,ahpC,dps,oxyR,,SodA,sufA,yaiA過酸化水素応答性プロモーター7種類に対してカラムを使わないゲル抽出を行った。

（9）プロモーターレスLacZの ミニプレ 遠心１分（20℃、14000rpm）して集菌(菌液を使いきるまで) 　　　　　↓

　　上清を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、よくボルテックスした

　　　　　↓

　　SolutionⅡを250μl加えた

　　　　　↓

　　SolutionⅢを350μl加えた

　　　　　↓

　　遠心５分（20℃、14000rpm）

　　　　　↓

　　上清をカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14000rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心1分（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　滅菌水をカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　溶出液を回収

プロモーターレスLacZの制限酵素処理

EcoRⅠ、pstⅠでカット。Total50μL

（10）pSB1A2 I13522、pSB6A1 K121013、pSB6 TetR-GFPのプレカルチャー

プレートを４分割してそれぞれをストリーク、１つはNothingとした。

↓

37℃でover night

(11)
前日にアルカリモニプレップと濃縮を終えていた3試料を100倍希釈して吸光度(260nm)を測定した
   試料A   pSB6A1(BBa_J04450,RFP) 
                 試料B　pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less)
                 試料C　pSB1A2(BBa_I13522,TetR)　
　　　　　　↓

以下のように試料を調整した

試料B（μl） 試料C（μl） 

DNA溶液 29 29 EcoRⅠ 0.15 0.8 SpeⅠ 0.085

XbaⅠ

0.89 

BufferH 5 5 MilliQ 15.8 14.31 合計 約50 約50

　　　　　↓

37℃でインキュベート

(12) 

　　遠心１分（20℃、14500rpm）して集菌

　　　　　↓

　　上清を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　　　　　↓

　　SolutionⅡを250μl加えた

　　　　　↓

　　SolutionⅢを350μl加えた

　　　　　↓

　　遠心５分（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　上清をカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心1分（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　抽出液を捨てた

　　　　　↓

　　滅菌水１００μlをカラムに入れた

　　　　　↓

　　遠心３０秒（20℃、14500rpm）

　　　　　↓

　　溶出液を回収

(13)

前日(10日)にEcoRⅠ-SpeⅠでカットしておいたAcrAB,SodA,sufA,ahpC,oxyR,yaiA,dpsの七種類のプロモーターに関して1%アガロースゲル(ゲル抽出用)で50V-45minの条件で電気泳動を行った。

(14)

＜方法＞

・抽出(QIAGENのQIAquick®Gel Extraction kit(250)を使用)

切りだしたゲルの重さを事前に量った。

↓

ゲルの三倍量のBufferQGを加え、50℃-10minでインキュベート

↓

ゲルの溶解後、ゲルと等量のisopropanolを加え、カラムに乗せた。

↓cfg.10,000rpm-1min

抽出物を捨て、0.5mLのBufferQGを加えた。

↓cfg.10,000rpm-1min

抽出物を捨て、0.75mLのBufferPEを加えた。

↓cfg.10,000rpm-1min

抽出物を捨て、エッペンにカラムを乗せかえH2Oを37μL加えた。

↓cfg.10,000rpm-1min

内5μLを濃度測定に使用した。(H2Oを95μL加え20倍希釈とした。)

(16)

CFP-On pSB6（ローコピーベクター）,各種プロモーターおよび、YFP-On pSB6（ローコピーベクター）、各種プロモーターのligation

ligationはT-4lagaseを用いligation条件を以下の条件で行った。

CFP-on pSB6,各種プロモーターのligation

Ⅰ(insert:vector=1:2)

Insert (sufA) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 2.4μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.2μl

Total 10μl

Insert (sodA) 6μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1.3μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.9μl

Total 10μl

Insert (ahpC) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 2.5μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.7μl

Total 10μl

Insert (oxyR) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 3.4μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0μl

Total 10μl

Insent (dps) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 3.6μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.2μl

Total 10μl

YFP on pSB6,各種プロモーターのligation

Ⅰ(insert:vector=1:2)

Insert (sufA) 6μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1.8μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.4μl

Total 10μl

Insert (sodA) 6μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.8μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 1.4μl

Total 10μl

Insert (ahpC) 6μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1.9μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.3μl

Total 10μl

Insert (oxyR) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 2.5μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.7μl

Total 10μl

Insent (dps) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 2.7μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 0.5μl

Total 10μl

CFP-on pSB6,各種プロモーターのligation

Ⅱ(insert:vector=1:5)

Insert (sufA) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.2μl

Total 10μl

Insert (sodA) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.4μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.8μl

Total 10μl

Insert (ahpC) 6μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 1.2μl

Total 10μl

Insert (oxyR) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1.4μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.8μl

Total 10μl

Insent (dps) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 1.5μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.7μl

Total 10μl

YFP-on pSB6,各種プロモーターのligation

Ⅱ(insert:vector=1:5)

Insert (sufA) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.6μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.6μl

Total 10μl

Insert (sodA) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.3μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.9μl

Total 10μl

Insert (ahpC) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.6μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.6μl

Total 10μl

Insert (oxyR) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.85μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.35μl

Total 10μl

Insent (dps) 5μl

Vevtor (CFP-On pSB6) 0.9μl

Buffer 1μl

T-4ligase 0.8μl

MilliQ 2.3μl

Total 10μl

以上の条件で作成したすべてのサンプルについてトランスフォーメーションを行い大腸菌に形質転換させた。

DH5α50μlに以上のサンプル全量をそれぞれ加え混ぜた後、3min氷上で静置した。

↓

４３℃で３０秒インキュベートした後、１０分間氷上で静置した。

↓

この各サンプルをLBプレート（アンピシリン　終濃度５０μg/ml）にまき３７℃でインキュベートした。（overnight）

【実験結果】 (1)ライゲーション済TetR・GFPのミニプレップ処理後は保存し、次回吸光度測定をした。 (2)翌日生えていた。

（3）1％アガロースゲル　5枚作成

（4）切り出し用ゲル　4枚作成　

(5) 以後ゲルの切り出しで使用。

※作成したEtBrは使うごとに、「正」の文字を一画足す。 5回切り出しを行ったEtBrは染色用とする。

(6)十分な量のDNAを抽出できたので予定通り、制限酵素処理を行った。

(7) PCR済のInverted lacZ①吸光度(100倍希釈)

0.094
0.090 
0.089
0.091
0.085

平均　0.0898 DNA濃度：0.0898×100×50＝4.49×10²(µl/ml) PCR済のInverted lacZ①吸光度(100倍希釈)

0.050
0.046 
0.048
0.050 
0.041

平均　0.0470 DNA濃度：0.0470×100×50＝2.35×10²(µl/ml)

制限酵素処理後はDNA抽出を行う。

(8)AcrAB,ahpC,dps,oxyR,,SodA,sufA,yaiAのうちAcrAB,ahpC,sufAがゲル抽出に成功した。 ゲル抽出に成功した試料の濃度は以下の通り

  AcrAB  ahpC  sufA 
濃度  28 ng/μL   1238 ng/μL   640 ng/μL 

(9) プロモーターレスLacZの ミニプレ

 Sample1(1/20)
 Sample2(1/20)
 Sample3(1/200)

OD260
0.546 
0.210 
0.072 

DNA量
546ng/μL 
210ng/μL 
720ng/μL 

全量
90μL 
95μL 
50μL 

(10) 翌日生えていた。

(11) 吸光度（260nm）の測定結果を示す

試料A 試料Ｂ 試料Ｃ 

0.004 0.01 0.057 

0.002 0.01 0.05 

0.007 0.01 0.053 

0.01 0.011 0.054 

0.004 0.011 0.062 

平均 0.0054 0.0104 0.0552

試料A;pSB1A2(BBa_I13522,TetR)→非常に薄くて使えないことが分かったので破棄 試料B;ｐSB6A1(BBa_J04450,RFP)→薄かったけれどとりあえず制限酵素処理をした 試料C;pSB6A1(BBa_I13507,RFP,promoter less)→薄かったけれどとりあえず制限酵素処理をした

(12)

まだ濃度が分からない状態。あす以降に吸光度を測定する。

(13)

AcrABはゲル抽出が可能な量を得られなかった。これはPCRがうまくいっていなかったと考えられる。また、yaiAはアガロースゲルのコームが貫通していたため溶液が流れ出てしまい、ゲル抽出が不可能だった。

残りの五つに関しては十分量得られたのでゲル抽出に移った。

(14)

各DNA濃度

・SodA

1 ; 0.021

2 ; 0.021

3 ; 0.022

4 ; 0.030

5 ; 0.022

Ave ; 0.0232

・sufA

1 ; 0.052

2 ; 0.060

3 ; 0.053

4 ; 0.052

5 ; 0.052

Ave ; 0.0538

・ahpC

1 ; 0.055

2 ; 0.053

3 ; 0.055

4 ; 0.055

5 ; 0.056

Ave ; 0.0548

・oxyR

1 ; 0.077

2 ; 0.078

3 ; 0.078

4 ; 0.071

5 ; 0.077

Ave ; 0.0762

・dps

1 ; 0.072

2 ; 0.093

3 ; 0.091

4 ; 0.080

5 ; 0.074

Ave ; 0.082

(15)

次の日(12日)にコロニーがはえていた。

コロニー数は非常に少ない。これは時間の関係上回復培養を行っていなったためでると考えられる。

【考察】 (8)4つの試料のゲル抽出が成功しなかったのはミニプレ後の試料のDNA濃度が不十分であったためであると考えられる。