Template:KIT-Kyoto-Augsut29

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Revision as of 05:09, 4 October 2010

August 29

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Time

9:00～

Member

岩城,古道,竹内,中村,臼井

Iwaki,Furumichi,Takeuchi,Nakamura,Usui

Purpose

(1)　pSB6A1(K121013)のアルカリミニプレップ、電気泳動、濃度測定　[古道]

(2)　hemH,ahpC,dps,OxyRのPCR　[古道]

(3)　SufA,OxyRのPCRの電気泳動による確認　[岩城]

(4)　pSB6A1(K121013)のmidiprep　[竹内]

Method

(1)　pSB6A1(K121013)のアルカリミニプレップ、電気泳動、濃度測定

　前日から培養したE.coliを1.5mlエッペンに8割ほど移した

　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)して集菌した

　↓上清を捨てた

　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした

　↓SolutionⅡを250μl加えた

　↓SolutionⅢを350μl加えた

　↓遠心5分(20℃、14,500rpm)

　↓上清をカラムに加えた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた

　↓20℃、14,500rpmで1分間遠心した

　↓抽出液を捨てた

　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)

　↓抽出液を捨てた

　↓滅菌水をカラムに入れた

　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心を行った

　↓溶出液を回収

　↓電気泳動を行い、同時に260nmの波長で吸光度測定を行った

(2)　hemH,ahpC,dps,OxyRのPCR

　プライマー(Forward)、プライマー(Reverse)を

　Mixしたプライマー(hemH,ahpC,dps,OxyR)を各1.5μLずつ、500μLのエッペンに入れた

　↓それぞれのエッペンに下に示した組成で溶液を加えた

　↓下に示したプログラムでPCR反応を行った

　↓PCR産物を電気泳動にかけた

テンプレートDNA	各0.5μL
10×PCR Buffer for KOD-Plus-	5μL
2mM d NTPs	5μL
2mM MgSO₄	4μL
MilliQ	33μL
KOD-Plus-	1μL

(ahpC,OxyR)
熱変性	熱変性	アニーリング	伸長反応	伸長反応	保存
94℃	94℃	62.2℃	68℃	68℃	4℃
2min	15sec	30sec	1min	2min	保持
	30サイクル

(hemH,dps)
熱変性	熱変性	アニーリング	伸長反応	伸長反応	保存
94℃	94℃	60℃	68℃	68℃	4℃
2min	15sec	30sec	33sec	2min	保持
	30サイクル

(3)　SufA,OxyRのPCRの電気泳動による確認

　PCR産物5μlを使用して電気泳動を行った

　1%ゲルを用いて135V,15minの条件で泳動した

(4)　pSB6A1(K121013)のmidiprep

　カラム2本に各EQ1 10ml加え平衡化した

　前日から培養していたpSB6A1(K121013)100ml

　↓R3を4 ml加えてボルテックスした

　↓L7を4 ml加えて5 min放置した

　↓N3を4 ml加えた

　↓12,000rpm,10 min,25℃で遠心した

　↓上清を保存しそれをカラムの上に全量載せた

　↓カラムにW8を10 ml×2加え洗浄した

　↓カラムにE4を5 ml加えた

　↓チューブに2-プロパノールを3.5 ml加えた

　↓15,000rpm,30min,4℃で遠心した

　↓70 %エタノールを3 ml加えた

　↓15,000rpm,30 min,4 ℃で遠心した

　↓上清を捨て、37 ℃でインキュベート、乾燥させた

　↓TE50 μlに溶かし、溶け切るまで冷蔵した

Results

(1)

吸光度測定結果
	0.059
	0.055
	0.062
	0.059
	0.070
平均	0.061

この値から計算して、

DNA濃度：0.061×100×50＝3.05×10²(μg/ml)

電気泳動の結果、きちんとバンドが検出された

(2)　PCR産物の電気泳動の結果、増幅に成功した

(3)　SufAに関しては全てのサンプルでバンドが検出できた

　OxyRに関しては1,2のサンプルはバンドが検出できたが、3,4では検出できなかったので破棄した

(4)　冷蔵庫で保管した

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 == August 29 ==
+<div align="right"><span style="font-size:10pt;">[[#notebook|>>top]]</span></div>
 '''Time'''
 :9:00～
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 :(1)　pSB6A1(K121013)のアルカリミニプレップ、電気泳動、濃度測定
 ::　前日から培養したE.coliを1.5mlエッペンに8割ほど移した
-::　↓遠心1分（20℃、14500rpm）して集菌した
+::　↓遠心1分(20℃、14,500rpm)して集菌した
 ::　↓上清を捨てた
 ::　↓SolutionⅠを250μｌ加えてピペッティングし、ボルテックスした
 ::　↓SolutionⅡを250μl加えた
 ::　↓SolutionⅢを350μl加えた
-::　↓遠心5分（20℃、14500rpm）
+::　↓遠心5分(20℃、14,500rpm)
 ::　↓上清をカラムに加えた
-::　↓遠心30秒（20℃、14500rpm）
+::　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)
 ::　↓抽出液を捨てた
 ::　↓SolutionⅣを500μlカラムに加えた
-::　↓20℃、14500rpmで1分間遠心した
+::　↓20℃、14,500rpmで1分間遠心した
 ::　↓抽出液を捨てた
 ::　↓SolutionⅤを700μlカラムに加えた
-::　↓遠心30秒（20℃、14500rpm）
+::　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)
 ::　↓抽出液を捨てた
-::　↓遠心30秒（20℃、14500rpm）
+::　↓遠心30秒(20℃、14,500rpm)
 ::　↓抽出液を捨てた
 ::　↓滅菌水をカラムに入れた
-::　↓20℃、14500rpmで30秒間遠心を行った
+::　↓20℃、14,500rpmで30秒間遠心を行った
 ::　↓溶出液を回収
 ::　↓電気泳動を行い、同時に260nmの波長で吸光度測定を行った
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 :<TD>2mM d NTPs</TD><TD>5μL</TD></TR>
 :<TR>
-:<TD>2mM MgSO₄</TD><TD>4μL</TD></TR>
+:<TD>2mM MgSO<SUB>4</SUB></TD><TD>4μL</TD></TR>
 :<TR>
 :<TD>MilliQ</TD><TD>33μL</TD></TR>
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 ::　↓L7を4 ml加えて5 min放置した
 ::　↓N3を4 ml加えた
-::　↓12000 g,10 min,25 ℃で遠心した
+::　↓12,000rpm,10 min,25℃で遠心した
 ::　↓上清を保存しそれをカラムの上に全量載せた
 ::　↓カラムにW8を10 ml×2加え洗浄した
 ::　↓カラムにE4を5 ml加えた
 ::　↓チューブに2-プロパノールを3.5 ml加えた
-::　↓15000 g,30 min,4 ℃で遠心した
+::　↓15,000rpm,30min,4℃で遠心した
 ::　↓70 %エタノールを3 ml加えた
-::　↓15000 g,30 min,4 ℃で遠心した
+::　↓15,000rpm,30 min,4 ℃で遠心した
 ::　↓上清を捨て、37 ℃でインキュベート、乾燥させた
 ::　↓TE50 μlに溶かし、溶け切るまで冷蔵した
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 :(2)　PCR産物の電気泳動の結果、増幅に成功した
 :(3)　SufAに関しては全てのサンプルでバンドが検出できた
 :   　OxyRに関しては1,2のサンプルはバンドが検出できたが、3,4では検出できなかったので破棄した
+:(4)　冷蔵庫で保管した
-:(4)　冷蔵庫で保管した