Template:KIT-Kyoto-Augsut28

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August 28

【時間】

9:00~

【実験担当】

岩城,竹内,中村,臼井,革島

【実験目的】

(1) AcrAB,dps,SodA,OxyRのプライマーミックス(PM)の作成
(2) AcrAB,oxyRのPCR
(3) dps,hemHのPCR
(4) dps,hemHの電気泳動
(5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ
(6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動

【実験内容】

(1) Primer MIXの作成
 AcrAB,dps,SodA,OxyRのPrimerF,PrimerRそれぞれ10μLずつを80μLのH2Oに溶解し、
 全量100μL、10pmol/μLにした溶液(PrimerMIX)を作成した
(2) AcrAB,oxyRのPCR
<PCR試薬組成>
AcrABoxyR
PrimerF1.5μL1.5μL
dNTPs5μL5μL
KOD-Plus- Buffer5μL5μL
テンプレートDNA(DH5α)1μL1μL
MgSO44μL4μL
H2O33μL33μL
KOD-Plus-1μL1μL
total50μL50μL
<設定>
Pre Denature・・・94℃、2min
35Cycles↓
 Denature・・・・・・・・94℃、15sec
 Annealing・・・・・・・62.8℃、30sec
 Extension・・・・・・・68℃、30sec
+Extension・・・・・・・68℃、2min            
              4℃、∞
(3) dps,hemHのPCR
</TR>
<PCR試薬組成>
dpshemH
PrimerF1.5μL1.5μL
dNTPs5μL5μL
KOD-Plus- Buffer5μL5μL
テンプレートDNA(DH5α)0.5μL0.5μL
MgSO44μL4μL
H2O33μL33μL
KOD-Plus-1μL1μL
total50μL50μL
<設定>
Pre Denature・・・94℃、2min
35Cycles↓
 Denature・・・・・・・・94.0℃、15sec
 Annealing・・・・・・・60.0℃、30sec
 Extension・・・・・・・68.0℃、30sec
+Extension・・・・・・・68.0℃、2min            

                 4℃、 ∞

(4) dps,hemHの電気泳動 
 (3)のPCRの後、増幅を確認するために電気泳動にかけ、写真撮影を行った
 諸条件を以下に示す
<条件>
 DNA量  5μL
 電気泳動 100V 30min
 EtBr処理 20min
(5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ

 pSB1A2 (E0420)、pSB1A2(I13522)について同様の操作を行った

培養後の培養液1.5mLを1.5mLマイクロチューブに移した。

 ↓

4℃、14,000rpm、5min遠心

  ↓

上澄みをデカンテーションで取り除いた

  ↓

菌体ペレットを氷冷したSoltionⅠ100μLに懸濁(vortex)

  ↓

SolutionⅡ200μLを加え混合

  ↓

5min on ice

  ↓

SolutionⅢ150μLを加え混合(vortex)

  ↓

5min on ice

  ↓

4℃、14,000rpm、10min遠心

  ↓

上澄みを新しい1.5mLマイクロチューブに移した

  ↓

等量(400μL)イソプロピルアルコールを加えた

  ↓

4℃、14,000rpm、20min遠心

  ↓

70%EtOHを200μL加える

  ↓

4℃、14,000rpm、10min遠心

  ↓

30sec 遠心乾燥

  ↓

TE30μL加えてプラスミドDNAとした

(6)pSB1A2 (E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ後、電気泳動を行いチェックした 

(条件)  DNA量    5μL       電気泳動   100V 20min       EtBr処理   20min 【実験結果】 (1)今回作成したPMは今後使用していく予定

(2)後日電気泳動により増幅の確認を行う

(3,4)hemH、dpsに関してははっきりとバンドが見え、増幅が確認された

(5,6)pSB1A2 (E0420)、pSB1A2(I13522)共に明瞭なバンドが確認された *詳細は写真参照 【考察】 (3,4)SpeⅠが届き次第、制限酵素処理を行う

(5,6)pSB1A2 (E0420)、pSB1A2(I13522)のプレートからシングルコロニーをピックアップして、LB培地(l)で培養