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Template:KIT-Kyoto-Augsut28
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| + | :: ↓SolutionⅡ200μLを加え混合 | ||
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| + | :: ↓4℃、14,000rpm、10min遠心 | ||
| + | :: ↓上澄みを新しい1.5mLマイクロチューブに移した | ||
| + | :: ↓等量(400μL)イソプロピルアルコールを加えた | ||
| + | :: ↓4℃、14,000rpm、20min遠心 | ||
| + | :: ↓70％EtOHを200μL加える | ||
| + | :: ↓4℃、14,000rpm、10min遠心 | ||
| + | :: ↓30sec 遠心乾燥 | ||
| + | :: ↓TE30μL加えてプラスミドDNAとした | ||
| - | + | :(6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動 | |
| + | :: pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ後、電気泳動を行いチェックした | ||
| + | :＜条件＞ | ||
| + | :: DNA量 5μL | ||
| + | :: 電気泳動 100V 20min | ||
| + | :: EtBr処理 20min | ||
| - | + | 【実験結果】 | |
| + | :(1) 今回作成したPMは今後使用していく予定 | ||
| - | + | :(2) 後日電気泳動により増幅の確認を行う | |
| - | + | :(3,4) hemH、dpsに関してははっきりとバンドが見え、増幅が確認された | |
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| + | :: ＊詳細は写真参照 | ||
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Revision as of 05:36, 14 September 2010
August 28
【時間】
- 9:00～
【実験担当】
- 岩城,竹内,中村,臼井,革島
【実験目的】
- (1) AcrAB,dps,SodA,OxyRのプライマーミックス(PM)の作成
- (2) AcrAB,oxyRのPCR
- (3) dps,hemHのPCR
- (4) dps,hemHの電気泳動
- (5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ
- (6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動
【実験内容】
- (1) Primer MIXの作成
- AcrAB,dps,SodA,OxyRのPrimerF,PrimerRそれぞれ10μLずつを80μLのH2Oに溶解し、
- 全量100μL、10pmol/μLにした溶液(PrimerMIX)を作成した
- (2) AcrAB,oxyRのPCR
＜PCR試薬組成＞ AcrAB oxyR PrimerF 1.5μL 1.5μL dNTPs 5μL 5μL KOD-Plus- Buffer 5μL 5μL テンプレートDNA(DH5α) 1μL 1μL MgSO4 4μL 4μL H2O 33μL 33μL KOD-Plus- 1μL 1μL total 50μL 50μL
- ＜設定＞
- Pre Denature・・・94℃、2min
- 35Cycles↓
- Denature・・・・・・・・94℃、15sec
- Annealing・・・・・・・62.8℃、30sec
- Extension・・・・・・・68℃、30sec
- +Extension・・・・・・・68℃、2min
- 4℃、∞
- (3) dps,hemHのPCR
＜PCR試薬組成＞ dps hemH PrimerF 1.5μL 1.5μL dNTPs 5μL 5μL KOD-Plus- Buffer 5μL 5μL テンプレートDNA(DH5α) 0.5μL 0.5μL MgSO4 4μL 4μL H2O 33μL 33μL KOD-Plus- 1μL 1μL total 50μL 50μL
- ＜設定＞
- Pre Denature・・・94℃、2min
- 35Cycles↓
- Denature・・・・・・・・94.0℃、15sec
- Annealing・・・・・・・60.0℃、30sec
- Extension・・・・・・・68.0℃、30sec
- +Extension・・・・・・・68.0℃、2min
4℃、 ∞
- (4) dps,hemHの電気泳動
- (3)のPCRの後、増幅を確認するために電気泳動にかけ、写真撮影を行った
- 諸条件を以下に示す
- ＜条件＞
- DNA量 5μL
- 電気泳動 100V 30min
- EtBr処理 20min
- (5) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ
- pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)について同様の操作を行った
- 培養後の培養液1.5mLを1.5mLマイクロチューブに移した
- ↓4℃、14,000rpm、5min遠心
- ↓上澄みをデカンテーションで取り除いた
- ↓菌体ペレットを氷冷したSoltionⅠ100μLに懸濁(vortex)
- ↓SolutionⅡ200μLを加え混合
- ↓5min on ice
- ↓SolutionⅢ150μLを加え混合(vortex)
- ↓5min on ice
- ↓4℃、14,000rpm、10min遠心
- ↓上澄みを新しい1.5mLマイクロチューブに移した
- ↓等量(400μL)イソプロピルアルコールを加えた
- ↓4℃、14,000rpm、20min遠心
- ↓70％EtOHを200μL加える
- ↓4℃、14,000rpm、10min遠心
- ↓30sec 遠心乾燥
- ↓TE30μL加えてプラスミドDNAとした
- (6) pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)の電気泳動
- pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のミニプレ後、電気泳動を行いチェックした
- ＜条件＞
- DNA量 5μL
- 電気泳動 100V 20min
- EtBr処理 20min
【実験結果】
- (1) 今回作成したPMは今後使用していく予定
- (2) 後日電気泳動により増幅の確認を行う
- (3,4) hemH、dpsに関してははっきりとバンドが見え、増幅が確認された
- (5,6) pSB1A2 （E0420）、pSB1A2（I13522）共に明瞭なバンドが確認された
- ＊詳細は写真参照
【備考】
- (3,4)SpeⅠが届き次第、制限酵素処理を行う
- (5,6)pSB1A2(E0420)、pSB1A2(I13522)のプレートからシングルコロニーをピックアップして、LB培地(1)で培養
