Template:KIT-Kyoto-Augsut17
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August 17
【時間】
- 9:00~17:00
【実験担当】
- 岩城,福山,古道,革島,吉村
【実験目的】
- (1) pSB1A2(12-M),pSB1C3(3-A)のカットチェック
- (2) pSB3K3,pSB6Aのミディプレップ
- (3) コンピテントセル(DH5α)の調整
- (4) DH5α(pSB1A2(12-M),pSB1A3(3-A))のシングルコロニーのピックアップ
【実験内容】
- (1) pSB1A2(12-M),pSB1C3(3-A)のカットチェック
- pSB1A2(12-M),pSB1C3(3-A)のシングルコロニーをピックアップし、
- それぞれ以下の条件で6時間ほど振とう培養を行った
- pSB1A2(12-M)→LB(+amp)(2ml)
- pSB1C3(3-A)→LB(+クロラムフェニコール)(2ml)
- ↓それぞれにアルカリミニプレップを行った
- ↓次の条件で制限酵素処理を行った
- ミリQ 11μl
- Hバッファー 2μl
- DNA(pSB1A2(12-M),pSB1C3(3-A)) 5μl
- 制限酵素(EcoRⅠ,PstⅠ) 各1μl
- ↓37℃で1時間インキュベートを行った
- ↓電気泳動を行った
- (2) pSB3K3,pSB6Aのミディプレップ
- 大量培養しておいたpSB3K3(Low copy vector),pSB6A1(Low copy vector)をそれぞれ50mLチューブに15~25mL程分注した
- ↓比重計で、それぞれ等量を量った
- ↓各チューブを4℃、4000rpmで10分間遠心した
- ↓この間、カラムにEQ1 10mLを加え、カラムを平衡化した
- ↓遠心後、上清を捨てた
- ↓沈殿にR3 4mLを加えて、Vortexした
- ↓L7 4mLを加え、ゆっくり混合し、5分間室温放置した
- ↓N3 4mLを加えた
- ↓室温、12,000rpmで10分間遠心した
- ↓上清を保存し、平衡化させておいたカラムの上に全量加えた
- ↓カラムの上にW8を10mL加え、洗浄した(×2)
- ↓カラムの下に15mLチューブを設置し、E4を5mL加え、DNAを洗浄した
- ↓E4が15mLチューブに出切って、DNAが完全に溶出し終わってから、isopropanolを3.5mL加えた
- ↓15,000rpm、4℃で30分間遠心した
- ↓遠心後、上清を捨てた
- ↓70% ethanolを3mL加えた
- ↓15,000rpm、4℃で5分間遠心した
- ↓遠心後、上清を捨てた
- ↓37℃でインキュベートし、適度に乾燥させた
- ↓TEを50μL加え、溶け切るまで冷蔵した
- ↓この吸光度を計測した
- (3) コンピテントセル(DH5α)の調整
- DH5αをLBプレート(抗生物質の入ってない)に播いた
- ↓37℃で一晩インキュベートした
- (4) DH5α(pSB1A2(12-M),pSB1A3(3-A))のシングルコロニーのピックアップ
- プレートにはえたDH5α(pSB1A2(12-M)),DH5α(pSB1A3(3-A))のコロニーを、
- それぞれ3つずつピックアップしてアンピシリン入りのLB液体培地で
- 1コロニーにつき培地3mlの条件で6時間ほど振とう培養した
【実験結果】
- (1) バンドがはっきり見えたので、これらを大量培養する
- (2) 吸光度の結果
pSB6A1 pSB3K3 1回目 1.132 0.155 2回目 0.994 0.138 3回目 0.984 0.126 4回目 0.990 0.122 5回目 0.975 0.125 平均 1.015 0.1332
- これよりpsB6A1のプラスミドの濃度は5075ng/μLである
- この結果より、十分な量のプラスミド抽出ができたことを確認した
- これよりpSB3K3 のプラスミドの濃度は666 ng/μLである
- この結果より、使用できる量のプラスミドが抽出できたことを確認した
- (3) 後日、十分な数のコロニーを確認した
- (4) 培養できていた→カットチェック