Team:HokkaidoU Japan/Notebook/August12

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前日のPCR産物のligationの結果を電気泳動で確かめた
* 4 uLの6x Sample Bufferを入れたもののうち、12 uLを流した
* 4 uLの6x Sample Bufferを入れたもののうち、12 uLを流した
* エチジウムブロマイドは20 uL使用した
* エチジウムブロマイドは20 uL使用した
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mini prepで得たプラスミドとPCRで得たパーツのDNAを電気泳動で確認した<br>
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制限酵素処理はしないので、反応系は以下の通り
制限酵素処理はしないので、反応系は以下の通り
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Revision as of 04:49, 19 September 2010

電気泳動1

HokkaidoU Japan 20100812a.jpg

前日のPCR産物のligationの結果を電気泳動で確かめた

  • 4 uLの6x Sample Bufferを入れたもののうち、12 uLを流した
  • エチジウムブロマイドは20 uL使用した

mini prep

  • LB液体培地で18時間培養した菌を使用した
    • 1-18Fは生育が悪かった
  • Chloroformのあと遠心し、430 uLの上清をとった
  • 1-18Fは2-プロパノールを入れたあと,遠心しても沈殿がほとんど得られなかった
  • 最後に30 uLのTEに溶かし、電気泳動をした

電気泳動2

HokkaidoU Japan 20100812b.jpg
HokkaidoU Japan 20100812c.jpg

mini prepで得たプラスミドとPCRで得たパーツのDNAを電気泳動で確認した
制限酵素処理はしないので、反応系は以下の通り

Parts 1-18F 2-21H 2-11P 2-24G 1-2M 3-1E
DNA solution 2 uL 2 2 1 1 1
6x Sample Buffer 0.4 uL 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4
  • マーカーはλ/HindIIIとpUC119/HinfIを使用
  • レーン1のマーカー(λ/HindIII)はウェルから流れ出てしまった
  • レーン3(mini prepのサンプル,1-18F)はバンドが確認できなかった(後日PCR)
  • レーン4ではplasmidのダイマー,トライマーがよく確認できる(plasmidの電気泳動ではよくあるらしい)