Team:HokkaidoU Japan/Notebook/August11

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(→LB培養)
(→グリセロールストック作成)
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* Prepared more tubes for mini preps int he future
* Prepared more tubes for mini preps int he future
-
==グリセロールストック作成==
+
==glycerol Stock==
-
* 80% Glycerol 1 mLをスクリューキャップのチューブにとった
+
* Added 1 mL of 80% Glycerol to screw cap tube
-
* やや濁った（約2時間培養）LB液体培地を1 mLとり，加えた
+
* Added 1 mL of cell and broth solution to Glycerol after 2h of incubation
-
* -80℃に保存した
+
* Sored at -80℃
==Ligation==
==Ligation==

Revision as of 06:08, 20 September 2010

Notebook

LB Culture

  • For every 2 mL of LB added 2 uL of antibiotics
  • Transfered a colony to LB
  • One colony didn't grow well so we isolated another one
  • Prepared more tubes for mini preps int he future

glycerol Stock

  • Added 1 mL of 80% Glycerol to screw cap tube
  • Added 1 mL of cell and broth solution to Glycerol after 2h of incubation
  • Sored at -80℃

Ligation

ligation用DNAの調製

  • 前日にPCRした50 uLのうち電気泳動しなかった49 uLを使用した
  • 制限酵素処理するまえにプライマーを除去するため，ろ過を行った
    • 分子量10000 Da以下を通すフィルタ（緑チューブ）を使用
    • 500 uLにするため450 uLのTEを加えた
    • ４サンプルすべてが45 uL以下になるまで１時間以上，10000Gで遠心した
  • 遠心したサンプルの容量を量り，（元の）45 uLになるようにTEでメスアップした
    • 後でLigation反応をするウォーターバスが500 uLチューブ用なので，これを使用した

ligation反応系

PCR productsは前日に作成した３番（1-23L（terminator）178 bp）を１つだけ使用した

１ ２ ３ ４
PCR products 1 uL 1 uL 1 uL 1 uL
10x H Buffer - 1 uL 1 uL 1 uL
DW 9 uL 7.5 uL 7.0 uL 7.5 uL
Xba1 - 0.5 uL 0.5 uL -
Pst1 - - 0.5 uL 0.5 uL
制限酵素処理 4℃ @37℃ 60 min
制限酵素不活化 @60℃ 15 min
ligation solution 10 uL 10 uL 10 uL 10 uL
Ligation反応 @16℃ 30 min
6x SB 4 uL 4 uL 4 uL 4 uL

→1% Agarose Gel Electrophoresis in 1/2 TBE

電気泳動

  • 制限酵素処理したサンプル１～４を電気泳動した
  • マーカーはpUC119/Hinf
  • DNA solutionが薄すぎたため，バンドが見えなかった
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